Сердечная клетка-предшественник
ДомДом > Новости > Сердечная клетка-предшественник

Сердечная клетка-предшественник

Mar 07, 2024

Биология связи, том 6, Номер статьи: 800 (2023) Цитировать эту статью

505 доступов

6 Альтметрика

Подробности о метриках

Внеклеточные везикулы (ВВ) представляют собой частицы клеточного происхождения, заключенные в двухслойный липидный слой и играющие роль в межклеточной коммуникации. Было показано, что ЭВ, полученные из сердечных клеток-предшественников (CPC), защищают миокард от ишемически-реперфузионного повреждения посредством проангиогенных эффектов. Однако механизмы, лежащие в основе ангиогенеза, индуцированного CPC-EV, остаются неясными. Здесь мы обнаружили, что способность CPC-EV индуцировать ангиогенез in vitro и стимулировать пути выживания теряется при воздействии на донорские клетки EV ионофора кальция. Протеомное сравнение активных и неактивных препаратов ЭВ вместе с фосфопротеомным анализом активированных эндотелиальных клеток выявило вклад белка-кандидата PAPP-A и сигнального пути IGF-R в EV-опосредованную активацию клеток, что было дополнительно подтверждено с помощью анализов ангиогенеза in vitro. . При дальнейшей очистке с использованием ультрацентрифугирования в градиенте йодиксанола ЭВ частично потеряли свою активность, что указывает на костимулирующую роль совместно выделенных белков в активации клеток-реципиентов. Наше более глубокое понимание механизмов активации клеток, опосредованной CPC-EV, проложит путь к более эффективной терапии на основе EV.

Инфаркт миокарда вызывает массивную гибель кардиомиоцитов, что приводит к образованию рубцов и ремоделированию сердца, что приводит к нарушению сердечной функции и прогрессирующему развитию сердечной недостаточности. Хотя сердечную недостаточность невозможно предотвратить с помощью доступных в настоящее время методов лечения, недавние исследования на животных показали, что сердечная функция после инфаркта миокарда может быть улучшена за счет терапевтического применения внеклеточных везикул (ВВ), полученных из стволовых и сердечных клеток-предшественников (CPC)1,2. .

ЭВ представляют собой наночастицы клеточного происхождения, окруженные липидным бислоем, которые содержат биологический груз, включая РНК, белки и липиды, и играют роль в нормальном клеточном гомеостазе и межклеточной коммуникации3. ЭВ обладают способностью активировать клетки-мишени за счет присутствия молекул адгезии и рецепторов, а также за счет доставки биоактивных молекул, полученных из родительской клетки2,4. После введения in vivo ЭВ, высвобождаемые Sca+ CPC, модулируют регенеративные процессы в сердце, способствуя ангиогенезу, уменьшая фиброз и ингибируя апоптоз кардиомиоцитов и тем самым способствуя восстановлению сердца5,6. Было показано, что ЭВ, полученные из других источников стволовых клеток, доставляют различные микроРНК и белки в разные клетки сердца, способствуя восстановлению сердца7,8,9. Несмотря на попытки документировать состав CPC-EV, по-прежнему недостаточно функциональных и механистических исследований, выясняющих, какие именно компоненты сложного белкового репертуара ответственны за репаративную функцию. Более того, клиническое применение ЭВ, полученных из стволовых клеток, затруднено из-за проблем с воспроизводимостью, связанных, среди прочего, с различиями в терапевтической активности между различными изолятами ЭВ10,11. Эксклюзионная хроматография (SEC) получила широкое распространение в качестве предпочтительного метода выделения ЭВ12,13. Однако, как и большинство методов на сегодняшний день, он не дает полностью чистой популяции EV. Было высказано предположение, что совместно выделенные белки, присутствующие в препаратах ЭВ, могут способствовать их терапевтической функции14,15,16,17,18. Следовательно, необходима более глубокая функциональная характеристика содержания CPC-EV и локализация этого содержания в препаратах CPC-EV, чтобы лучше понять механизмы действия, ведущие к более воспроизводимому терапевтическому применению CPC-EV. В этом исследовании мы намеревались разгадать белково-опосредованное воздействие CPC-EV на эндотелиальные клетки. Во-первых, мы идентифицировали функциональные белковые компоненты CPC-EV, участвующие в активации микрососудистых эндотелиальных клеток человека (HMEC-1), путем сравнения содержания функциональных и нефункциональных (CPC-) препаратов EV. Затем мы изучили вклад отдельных EV-ассоциированных белков. Связанный с беременностью белок A плазмы (PAPP-A) и нидоген-1 (NID1) в CPC-EV-опосредованный ангиогенез путем генерации нокаутных (KO) EV с использованием CRISPR. /Технология Cas9. Наконец, мы исследовали вклад белков, связанных с EV, по сравнению с совместно изолированными белками в функцию CPC-EV, используя очистку на основе градиентной плотности йодиксанола.

0.75) from only 50 µg of HMEC-1 lysates. Hierarchical clustering of the significantly changing phosphosites revealed one cluster with increased phosphorylation in veh-EV-treated HMEC-1 compared to PBS- and Ca ion-EV-treated HMEC-1 (Fig. 3b, dashed cluster C1). To better understand which intracellular signalling pathways were activated by veh-EVs, the phosphosites present in cluster C1 (n = 195) were further annotated against PANTHER pathways. The Insulin/IGF pathway-MAPKK/MAPK cascade, Ras- and Interleukin signalling pathways were identified as the most enriched pathways in HMEC-1 (Fig. 3c). Furthermore, significantly altered phosphosites between veh- and Ca ion-EV-stimulated HMEC-1 included members of the PI3K-AKT and MAPK signalling pathways (highlighted in Fig. 3d). This demonstrates the specific intracellular pathways implicated in CPC-EV-mediated HMEC-1 activation./p>2) in veh-EV-treated HMEC-1 are highlighted in red, while significantly changing proteins in PBS are highlighted in blue. b Hierarchical clustering of 1549 significantly changing phosphosites (ANOVA, q-value ≤ 0.05) found in HMEC-1 upon stimulation with veh-EVs, Ca ion-EVs and PBS. Cluster C1, including veh-EV-induced specific phosphorylation, is highlighted with dashed lines. c PANTHER Pathway enrichment analysis of phosphoproteins found in clusters C1, ranked on fold enrichment. *= FDR < 0.05, **= FDR < 0.01, ***= FDR < 0.005. d Volcano plot showing fold changes in the phosphoproteome of HMEC-1 upon veh-EV compared with Ca ion-EV stimulation, also represented in Fig. 6a. P-values were calculated using student’s T-test, and significantly changing phosphosites (p-value < 0.05 and fold change >2) after veh-EV treatment are highlighted in red, while significantly changing phosphosites after Ca ion-EV treatment are highlighted in blue./p>2) in veh-EVs are highlighted in red, while significantly changing proteins in Ca ion- and SKOV-3-EVs are highlighted in blue. c Western blot analysis confirming the enrichment of MS-identified proteins NID1, TSG-6, LAMC1, PAPP-A, CD81 and β-actin (β-ACT) in veh-EVs compared with Ca ion-EVs. CNX was solely present in CPC lysate (CL). Complete blots of β-ACT, PAPP-A and NID1 are displayed in Supplementary Fig. 10. d Venn diagram showing number of proteins with >2-fold significant enrichment (p ≤ 0.05) in veh-EVs compared to Ca ion- and SKOV-3-EVs, and overlap between those two populations. e Gene ontology analysis using PANTHER of enriched biological processes for the 105 overlapping proteins, depicting number of identified proteins in each group, ranked on smallest corrected p-value (−log10(FDR))./p>20 mL of PBS, and complete removal was confirmed using an optical eclipse brix handheld refractometer (Bellingham+Stanley)./p>